Tutti i passaggi sono stati svolti in contenitori e con strumenti sterili. Ai campioni lisati in Trizol® è stato aggiunto il cloroformio (0.2 ml/ml di Trizol®) che permette di ottenere, dopo centrifugazione, la separazione di due fasi: una fase inferiore di colore rosa in cui sono disciolte le proteine e una fase superiore, acquosa, incolore, in cui è disciolto l"RNA; nell"interfaccia si osserva la presenza di una striscia bianca contenente il DNA genomico. La fase acquosa è stata raccolta in una nuova provetta, prestando attenzione a non prelevare il DNA. L'RNA è stato precipitato aggiungendo isopropanolo (0.5 ml/ml di Trizol®): i campioni sono stati incubati per 10 minuti, a temperatura ambiente, dopo agitazione, e successivamente centrifugati a 4°C. Il pellet di RNA è stato lavato con 1 ml di etanolo diluito al 75% con acqua sterile e ricentrifugato per 5 minuti a 4°C. Il surnatante è stato quindi eliminato, e l"etanolo residuo è stato fatto evaporare. Il pellet di RNA così ottenuto è stato risospeso in un volume idoneo di acqua distillata trattata con DEPC (dietilpirocarbonato), mantenuto in ghiaccio per 1 ora e infine riscaldato per 10 minuti a 60°C, per ottenere una migliore solubilizzazione in acqua. Il DEPC serve per impedire la degradazione dell'RNA ad opera delle ribonucleasi. Il dosaggio dell"RNA totale è stato ottenuto mediante una misura spettrofotometrica effettuata con BioPhotometer (Eppendorf AG, Hamburg, Germany).  I risultati dell"ibridazione su chip sono stati analizzati utilizzando il software BeadStudio (Illumina). I dati ottenuti dall"analisi di microarray sono stati normalizzati secondo la funzione cubic-spline del software e successivamente filtrati utilizzando Excel (Microsoft). Infine, l"aggregazione dei dati e la loro rappresentazione sono state realizzate con l"ausilio del software GEDAS.