Per verificare che la banda purificata di 55 kD della frazione corrispondesse effettivamente alla proteina strutturale L1 è stato eseguito l'immunoblotting.Al termine della corsa elettroforetica il separating gel è stato prelevato e incubato per 15 minuti nel tampone di trasferimento (Transfer buffer: Tris base 5.81 g, glicina 2.93 g, SDS 0.375 g, metanolo 20%, volume finale 1000 ml). Successivamente il gel è stato inserito nello strumento "Semi Dry Blotter II" della ditta Kem-En-Tec ed è stato inumidito con il tampone di trasferimento; la successiva applicazione di una corrente elettrica di 120 Volt ha promosso il trasferimento delle proteine sulla membrana PVDF (polyvinylidene fluoride, Immobilon-P, Millipore). Una volta avvenuto il trasferimento, il filtro è stato incubato per una notte a 4˚C in Blocking solution (PBS 1X, Tween 0.1% e latte scremato in polvere al 10%). Il giorno seguente, la membrana è stata incubata per un'ora a 37˚C con l'anticorpo primario diluito in di PBS 1X-Tween 0.1%-latte scremato in polvere 3%. L'anticorpo primario utilizzato è il seguente: anticorpo policlonale di coniglio anti-L1 di papillomavirus bovino di tipo 1(diluizione 1:4000).Terminata l'incubazione con l'anticorpo primario si sono eseguiti lavaggi in PBS 1X-Tween 0.1%-latte scremato in polvere 3%, conclusi i quali è seguita l'incubazione per un'ora a 37˚C con l'anticorpo secondario diluito in PBS 1X 1%-BSA 1%-Tween 0.1%. L'anticorpo secondario utilizzato è il seguente: anticorpo secondario di capra anti-Ig di coniglio coniugato con perossidasi di rafano.Conclusa l'incubazione con l'anticorpo secondario, la membrana è stata sottoposta a lavaggi con una soluzione di PBS 1X-Tween 0.1% e il segnale è stato evidenziato utilizzando il substrato della perossidasi. Il segnale è stato rivelato in seguito a esposizione della membrana su una lastra fotografica (Amersham).