2)を発現するHEK293T細胞株である。ACE2はHCoV-NL63、SARS-CoV、SARS-CoV-2など、一部のコロナウイルスの受容体としても機能しており、ACE2とSARS-CoV-2のスパイクタンパク質の相互作用がウイルスの細胞への侵入に関与している。して機能するアンジオテンシン1–7に変換する働きを持つ。本製品はレンチウイルスを用いてヒトACE2を形質導入した安定発現株で、CMVプロモーター下でACE2を高発現している。632668~632671)などを用いて作製したSARS-CoV-2シュードウイルスと組み合わせて、宿主細胞株として利用することができる。FAB9332G)を使用して、フローサイトメトリーで検出した。非標識細胞をネガティブコントロールとして使用した。Lineを繰り返し継代し、ACE2の発現レベルをRT-qPCRで測定した。^(-ΔΔCt)を計算することにより、293T細胞株に対するACE2の相対発現量を求めた。Lineは、継代を重ねた後も安定してACE2の発現レベルを維持していることが確認された。Shotsを用いて、蛍光タンパク質ZsGreen1をコードし、SARS-CoV-2スパイクタンパク質の野生型またはD614Gエンベロープ(Truncated)を持つシュードタイプレンチウイルスを作製した。Lineに形質導入した。感染72時間後の形質導入細胞の顕微鏡画像。6日後にフローサイトメトリーによって測定した。Shotsを用いて、ルシフェラーゼタンパク質をコードし、SARS-CoV-2スパイクタンパク質の野生型またはD614Gエンベロープ(全長、またはTruncated)を持つシュードタイプレンチウイルスを作製した。Lineに形質導入し、6日後にルシフェラーゼ活性を測定した。バックグラウンドシグナルの確認のため、エンベロープタンパク質を持たないウイルスをコントロールとして用いた。感染から3日後にルシフェラーゼ活性を測定し、ウイルス感染の評価を行った。血清を添加していないウイルスに対する中和率をグラフに示した(値は3回の試験の平均±SDで記載)。陰性コントロールとして健康なアカゲザルの血清を使用した。感染から3日後にルシフェラーゼ活性を測定し、ウイルス感染の評価を行った。シュードウイルスのみを添加したコントロールに対する中和率をグラフに示した(値は3回の試験の平均±SDで記載)。到着後、ただちに液体窒素中で保存する。液体窒素保存ができない場合は、ただちに細胞を融解し、培養を行う。細胞融解後の培養にはコラーゲンコートディッシュの使用をお勧めします。細胞の接着には最大48時間かかります。本製品の使用に関して本製品は、レンチウイルスを用いてヒトACE2を形質導入し作製された細胞です。添付の文書をご確認のうえ、お取扱いにはご注意ください。ページの製品はすべて研究用として販売しております。ヒト、動物への医療、臨床診断用には使用しないようご注意ください。して使用しないでください。ための改変、商用製品の製造に使用することは禁止されています。タカラバイオ製品に関連するライセンス・パテントについては、ライセンスマークをクリックして内容をご確認ください。他メーカーの製品に関するライセンス・パテントについては、各メーカーのウェブサイトまたはメーカー発行のカタログ等でご確認ください。ウェブサイトに掲載している会社名および商品名などは、各社の商号、または登録済みもしくは未登録の商標であり、これらは各所有者に帰属します。