Forschung - Universitätsklinikum Jena
Sektion Experimentelle Virologie des Instituts für Medizinische Mikrobiologie ... Grundlagen zur Einschätzung des Potentials von ProcCluster® und ...
Forschung

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# Forschung

# Aktuelle Projekte

## SFB 1278 Polytarget D02: Verpackungsoptimierung für antivirale und entzündungshemmende Wirkstoffe zur Behandlung von Infektionen der Atemwege durch Viren mit Pandemiepotential

[https://www.polytarget.uni-jena.de/projekte/d02](https://www.polytarget.uni-jena.de/projekte/d02)

## Analysis of the newly discovered control of HSV-1 replication by the PP2A B-type subunit PR130

Mit Förderung der Deutschen Forschungsgemeinschaft: DFG Projektnummer 502534123

Projektleitung:   Prof. Dr. Andreas Henke, Sektion für Experimentelle Virologie, Institut für Medizinische Mikrobiologie, Universitätsklinikum Jena; Prof. Dr. Oliver Krämer, Institut für Toxikologie, Universitätsmedizin Mainz

Zusammenfassung:

Die Phosphatase-2A (PP2A) B-Untereinheit PR130/PPP2R3A kontrolliert die Aktivierung von Checkpoint-Kinasen und steuert somit den Ablauf des Zellzyklus und die genomische Integrität der Zelle. Virusinfektionen induzieren DNA-Replikationsstress, DNA-Schäden und verursachen die Aktivierung dieser Kinasen. Da bislang unbekannt ist, ob der PP2A-PR130 Komplex virale Replikationsabläufe beeinflusst, wurde in enger Zusammenarbeit der Projektleiter dieses Forschungsvorhaben erfolgreich etabliert.

Bisherige Daten zeigen, dass PR130 die Replikation von Herpes-simplex-Virus Typ 1 (HSV-1) im Zellkern unterdrückt und die Phosphorylierung und Stabilität von Checkpoint-Kinasen in infizierten Zellen reguliert. Basierend auf dem CRISPR-Cas9 Verfahren wird nunmehr untersucht, inwiefern PR130 die HSV-1-verursachten Veränderungen des Zellzyklus und der DNA-Reparaturmechanismen moduliert. In diesem Kontext werden zelluläre und virale Proteine mittels Proteomik-Analysen bestimmt, die durch den PP2A-PR130-Komplex kontrolliert werden. Der Einfluss klinisch anwendbarer Checkpoint-Kinase-Inhibitoren auf die Virusreplikation wird in relevanten Zellkultursystemen analysiert. Darüber hinaus wird auch der Einfluss der PP2A B-Untereinheit B56β auf die Replikation von HSV-1 untersucht.

Da bislang keine Publikationen zum Einfluss von PR130 auf die Replikation viraler Infektionserreger existieren, werden die Ergebnisse der geplanten Experimente die bestehende Datenlage signifikant erweitern.

Projektlaufzeit: 01.01.2023-31.12.2025

## PNEUTHERA - Quantitative monitoring of tailored therapy against bacterial super-infection in viral pneumonia by spatiotemporal microscopy

[https://www.infectooptics.de/de/pneuthera.html](https://www.infectooptics.de/de/pneuthera.html)

## Charakterisierung des antiviralen und möglichen entzündungshemmenden Wirkmechanismus von ProcCluster® während Influenza Virus bzw. SARS-CoV-2 Infektion

![](/MedWeb_media/_vdG/2021/EfreCovid-height-308-width-1389.png)

Mit Förderung des EUROPÄISCHEN FONDS FÜR REGIONALE ENTWICKLUNG (EFRE-OP 2014-2020) als Teil der Reaktion der Union auf die COVID-19-Pandemie (REACT-EU)

Kooperationspartner: inflamed pharma GmbH Jena

**Zusammenfassung:**

Zirkulierende Viren, wie immer wieder neu auftretende Influenza A Viren oder Coronaviren, hierzu gehört das schwere akute Respiratorische Syndrom Corona Virus-2 (SARS-CoV-2), stellen nach wie vor eine globale Belastung für die öffentliche Gesundheit dar. Im Allgemeinen teilen Influenza A Viren und Coronaviren das Pandemiepotenzial. Die Entwicklung effizienter Impfstoffe ist zeitaufwendig und spezifische antivirale Behandlungsstrategien sind rar. Die Zulassung von Substanzen, die bereits klinisch für andere Krankheiten verwendet werden, sind kurzfristig eine vielversprechende Option zur Behandlung von Infektionen. Hierbei sind pharmazeutische Substanzen die Virus-unterstützende zelluläre Faktoren oder überschießende Immunreaktionen hemmen bzw. Entzündungsprozesse auflösen von besonderem Interesse. Erste Untersuchungen deuten auf eine hemmende Wirkung von ProcCluster®, einem Lokalanästhetikum mit entzündungshemmenden Eigenschaften, sowohl auf Influenza A Virus als auch auf SARS-CoV-2 Vermehrung und Verbreitung _in vitro_ hin.

Während der Förderung durch den EUROPÄISCHEN FONDS FÜR REGIONALE ENTWICKLUNG – EUROPA FÜR THÜRINGEN werden in Kooperation mit der inflamed pharma GmbH Jena die Regulation der antiviralen und möglichen entzündungshemmenden Wirkung von ProcCluster® und ProcCluster®-haltigen Produkten während Influenza A Virus bzw. SARS-CoV-2 Infektion _in vitro_ näher charakterisiert. Die Aufklärung der molekularen und regulatorischen Mechanismen von ProcCluster® und ProcCluster®-haltigen Produkten während viraler Infektion ist notwendig, um zunächst Grundlagen zur Einschätzung des Potentials von ProcCluster® und ProcCluster®-haltigen Produkten für eine spezifische Anwendbarkeit bei Influenza A Virus oder SARS-CoV-2 Infektion zu erhalten.

**Publikation:**

- Häring, C.; Jungwirth, J.; Schroeder, J.; Löffler, B.; Engert, B.; Ehrhardt, C. The Local Anaesthetic Procaine Prodrugs ProcCluster® and Procaine Hydrochloride Impair SARS-CoV-2 Replication and Egress In Vitro. _Int. J. Mol. Sci._ **2023**, _24_, 14584\. [https://doi.org/10.3390/ijms241914584](https://doi.org/10.3390/ijms241914584)
- Häring C, Schroeder J, Jungwirth J, Löffler B, Henke A, Engert B and Ehrhardt C (2024) ProcCluster® and procaine hydrochloride inhibit the replication of influenza A virus in vitro. Front. Microbiol. 15:1422651.

[https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1422651](https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1422651)


## COMDRUG-CoV-2: Die Wirkung häufig eingenommener Medikamente auf das alveolare Gleichgewicht während einer SARS-CoV-2-Infektion

![](https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/5/5c/BMBF_Logo.svg/1024px-BMBF_Logo.svg.png)

Mit Förderung des BMBF

**Zusammenfassung:**

Ziel des Projektes ist es, unter Verwendung eines komplexen humanen Alveolus-on-a-Chip Modells, einem Modell, das Bedingungen der menschlichen Lunge nachahmt, die Pathophysiologie der SARS-CoV-2 Infektion zu untersuchen. Dabei soll die Wirkung von Substanzen gegen allgemeine Erkältungskrankheiten, Herz-Kreislauf-Erkrankungen und überschießende Immunantwort getestet werden. Insbesondere deren Wirkung auf Vermehrung und Verbreitung von SARS-CoV-2 im Epithel und Endothel, die Aktivierung von Entzündungsparametern und Schädigung der Zellbarrieren wird analysiert. Darüber hinaus werden SARS-CoV-2 induzierte Effekte auf Endothelzellen und die von diesen ausgehende Funktionen auf das vaskuläre System näher betrachtet, da dieses bei schweren COVID-19 Verläufen zu Blutgerinnungsstörungen und Thrombenbildung führen können.

**Projektlaufzeit:** 01.05.2020 bis 30.01.2022

**Publikationen:**

- Deinhardt-Emmer S, Böttcher S, Häring C, Giebeler L, Henke A, Zell R, Jungwirth J, Jordan PM, Werz O, Hornung F, Brandt C, Marquet M, Mosig AS, Pletz MW, Schacke M, Rödel J, Heller R, Nietzsche S, Löffler B, Ehrhardt C. 2021. [SARS-CoV-2 causes severe epithelial inflammation and barrier dysfunction.](https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33637603/) J Virol doi:10.1128/JVI.00110-21.
- Jungwirth J, Häring C, König S, Giebeler L, Doshi H, Brandt C, Deinhardt-Emmer S, Löffler B, Ehrhardt C. 2022. D,L-Lysine-Acetylsalicylate + Glycine (LASAG) Reduces SARS-CoV-2 Replication and Shows an Additive Effect with Remdesivir. Int. J. Mol. Sci., 2022, 23 (13), 6880. [https://doi.org/10.3390/ijms23136880](https://doi.org/10.3390/ijms23136880) (registering DOI) - 21 Jun 2022


## Infektiosität der Covid-19-Patienten über die Dauer der Erkrankung

[![](/MedWeb_media/Presse/2020/Bilder+PM+2020/CZS_RGB_pos_Logo-height-892-width-1389.png)](www.carl-zeiss-stiftung.de)

Mit Förderung der Carl-Zeiss-Stiftung

**Zusammenfassung:**

Die Diagnostik einer Infektion mit SARS-CoV2 erfolgt über den Nachweis von genetischem Material des Virus mittels Reverse-Transkriptase-quantitativer Polymerase-Kettenreaktion (RT-qPCR). In Proben von COVID-19-Patienten lässt sich genetisches Material allerdings oft 14 Tage und länger nachweisen, obwohl die Patienten keine Symptome mehr zeigen. Die Infektiosität von COVID-19-Patienten kann über die Anzucht und Bestimmung infektiöser Viruspartikel in Zellkultursystemen mittels sog. Plaquetitration ermittelt werden. Diese Methode ist jedoch sehr zeitaufwendig und deshalb nicht für die Routinediagnostik geeignet. In dem Projekt werden beide Methoden eingesetzt, um über die Dauer der Erkrankung tatsächlich vorliegendes infektiöses Material zu ermitteln und mit den Werten der RT-qPCR  zu vergleichen. Weiterhin ist es Ziel des Projektes eine Methode zu entwickeln, die den Nachweis von infektiösem Material auch in der Routinediagnostik erlaubt.

**Projektlaufzeit:** 01.05.2020 bis 30.01.2021

**Publikation:** Deinhardt-Emmer S, Wittschieber D, Sanft J, Kleemann S, Elschner S, Haupt KF, Vau V, Häring C, Rödel J, Henke A, Ehrhardt C, Bauer M, Philipp M, Gassler N, Nietzsche S, Löffler B, Mall G. 2021. [Early postmortem mapping of SARS-CoV-2 RNA in patients with COVID-19 and the correlation with tissue damage](https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33781385/). Elife 10: e60361.

[Pressemitteilung](/Uniklinikum+Jena/Aktuelles/Archiv/PM_Archiv+2021/COVID_19_Atlas+der+Gewebesch%C3%A4den+und+Viruslast+in+Organen-p-25562.html "COVID-19-Atlas der Gewebeschäden und Viruslast in Organen")

## Infektiosität von Verstorbenen, die an Covid-19 erkrankt waren

[![](/MedWeb_media/Presse/2020/Bilder+PM+2020/CZS_RGB_pos_Logo-height-892-width-1389.png)](www.carl-zeiss-stiftung.de)

Mit Förderung der Carl-Zeiss-Stiftung

Kooperationspartner:

Institut für Medizinische Mikrobiologie (Prof. Dr. Bettina Löffler)

und [Institut für Rechtsmedizin](/remed/Forschung.html "Forschung") (Prof. Dr. Gita Mall)

**Zusammenfassung:**

Es wird untersucht, ob in Verstorbenen infektiöse SARS-CoV2 nachweisbar sind und ob von diesen eine Gefährdung ausgeht. Da derzeit wenige Informationen diesbezüglich vorliegen, ist geplant, verschiedene Organe auf die potentielle Infektiosität zu untersuchen.

**Projektlaufzeit:** 01.05.2020 bis 30.01.2021

**Publikation:** Deinhardt-Emmer S, Wittschieber D, Sanft J, Kleemann S, Elschner S, Haupt KF, Vau V, Häring C, Rödel J, Henke A, Ehrhardt C, Bauer M, Philipp M, Gassler N, Nietzsche S, Löffler B, Mall G. 2021. [Early postmortem mapping of SARS-CoV-2 RNA in patients with COVID-19 and the correlation with tissue damage](https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33781385/). Elife 10: e60361.

[Pressemitteilung](/Uniklinikum+Jena/Aktuelles/Archiv/PM_Archiv+2021/COVID_19_Atlas+der+Gewebesch%C3%A4den+und+Viruslast+in+Organen-p-25562.html "COVID-19-Atlas der Gewebeschäden und Viruslast in Organen")

# Publikationen (2019 - 2024)

## 2019

01. **Deinhardt-Emmer S, Haupt KF**, Garcia-Moreno M, Geraci J, Forstner C, Pletz M, **Ehrhardt C**, Löffler B. 2019. Staphylococcus aureus Pneumonia: Preceding Influenza Infection Paves the Way for Low-Virulent Strains. Toxins (Basel) 11.
02. Dornfeld D, Petric PP, Hassan E, **Zell R**, Schwemmle M. 2019. Eurasian Avian-Like Swine Influenza A Viruses Escape Human MxA Restriction through Distinct Mutations in Their Nucleoprotein. Journal of Virology 93.
03. Egorova A, Ekins S, **Schmidtke M**, Makarov V. 2019. Back to the future: Advances in development of broad-spectrum capsid-binding inhibitors of enteroviruses. Eur J Med Chem 178:606-622.
04. Fu YG, Dürrwald R, Meng FD, Tong J, Wu NH, Su A, Yin XP, Haas L, **Schmidtke M, Zell R**, Krumbholz A, Herrler G. 2019. Infection Studies in Pigs and Porcine Airway Epithelial Cells Reveal an Evolution of A(H1N1)pdm09 Influenza A Viruses Toward Lower Virulence. Journal of Infectious Diseases 219:1596-1604.
05. Grienke U, Zwirchmayr J, Peintner U, Urban E, Zehl M, **Schmidtke M**, Rollinger JM. 2019. Lanostane Triterpenes from Gloeophyllum odoratum and Their Anti-Influenza Effects. Planta Med 85:195-202.
06. Krumbholz A, Roempke J, Liehr T,  Groth M, Meerbach A, Schacke M, Maschkowitz G, Fickenscher H, Klapper W, **Sauerbrei A, Wutzler P, Zell R.** 2019\. Macaca arctoides gammaherpesvirus 1 (strain herpesvirus Macaca arctoides): virus sequence, phylogeny and characterisation of virus-­‐transformed macaque and rabbit cell lines. Medical Microbiology and Immunology 208(1) 109-­129.
07. Pfaff F, **Glück B**, Hoyer T, Rohlander D, **Sauerbrei A, Zell R**. 2019\. Tungsten carbide nanoparticles show a broad spectrum virucidal activity against enveloped and nonenveloped model viruses using a guideline-standardized in vitro test. Letters in Applied Microbiology 69:302-309.
08. Preugschas HF, Hrincius ER, Mewis C, Tran GVQ, Ludwig S, **Ehrhardt C.** 2019\. Late activation of the Raf/MEK/ERK pathway is required for translocation of the respiratory syncytial virus F protein to the plasma membrane and efficient viral replication. Cell Microbiol 21:e12955.
09. Raja V, Salsaa M, Joshi AS, Li Y, van Roermund CWT, Saadat N, Lazcano P, **Schmidtke M**, Huttemann M, Gupta SV, Wanders RJA, Greenberg ML. 2019. Cardiolipin-deficient cells depend on anaplerotic pathways to ameliorate defective TCA cycle function. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids 1864:654-661.
10. Schloer S, Hubel N, Masemann D, Pajonczyk D, Brunotte L, **Ehrhardt C**, Brandenburg LO, Ludwig S, Gerke V, Rescher U. 2019. The annexin A1/FPR2 signaling axis expands alveolar macrophages, limits viral replication, and attenuates pathogenesis in the murine influenza A virus infection model. FASEB J 33:12188-12199.
11. Wald J, Pasin M, Richter M, Walther C, Mathai N, Kirchmair J, Makarov VA, Goessweiner-Mohr N, Marlovits TC, Zanella I, Real-Hohn A, Verdaguer N, Blaas D, **Schmidtke M.** 2019\. Cryo-EM structure of pleconaril-resistant rhinovirus-B5 complexed to the antiviral OBR-5-340 reveals unexpected binding site. Proc Natl Acad Sci U S A 116:19109-19115.
12. Yinda CK, Esefeld J, Peter HU, Matthijnssens J, **Zell R**. 2019\. Penguin megrivirus, a novel picornavirus from an Adelie penguin (Pygoscelis adeliae). Archives of Virology 164:2887-2890.
13. **Zell R**, Groth M, Krumbholz A, Lange J, Philipps A, Dürrwald R. 2019. Displacement of the Gent/1999 human-­like swine H1N2 influenza A virus lineage by novel H1N2 reassortants in Germany. Archives of Virology 165(1) 55-­67.

## 2020

01. Bohm K, Strompl J, Krumbholz A, **Zell R**, Krause G, Sievers C. 2020. Establishment of a Highly Sensitive Assay for Detection of Hepatitis E Virus-Specific Immunoglobulins. Journal of Clinical Microbiology 58.
02. Bunke J, Receveur K, Oeser AC, Gutsmann I, Schubert S, Podschun R, **Zell R**, Fickenscher H, Krumbholz A. 2020. Epidemiology of bacteria and viruses in the respiratory tract of humans and domestic pigs. Apmis 128:451-462.
03. Chayrov R, Parisis NA, Chatziathanasiadou MV, Vrontaki E, Moschovou K, Melagraki G, Sbirkova-Dimitrova H, Shivachev B, **Schmidtke M**, Mitrev Y, Sticha M, Mavromoustakos T, Tzakos AG, Stankova I. 2020. Synthetic Analogues of Aminoadamantane as Influenza Viral Inhibitors-In Vitro, In Silico and QSAR Studies. Molecules 25.
04. Dastjerdi A, Benfield C, Everest D, Stidworthy MF, **Zell R.** 2020\. Novel enteric viruses in fatal enteritis of grey squirrels. Journal of General Virology 101:746-750.
05. Deckert V, Deckert-Gaudig T, Cialla-May D, Popp J, **Zell R**, Deinhardt-Emmer S, Sokolov AV, Yi Z, Scully MO. 2020. Laser spectroscopic technique for direct identification of a single virus I: Faster CARS. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020 Nov 10;117(45):27820-27824.
06. **Deinhardt-Emmer S**, Rennert K, **Schicke E**, Cseresnyes Z, **Windolph M**, Nietzsche S, Heller R, Siwczak F, **Haupt KF**, Carlstedt S, **Schacke M**, Figge MT, **Ehrhardt C**, Löffler B, Mosig AS. 2020. Co-infection with Staphylococcus aureus after primary influenza virus infection leads to damage of the endothelium in a human alveolus-on-a-chip model. Biofabrication 12:025012.
07. Dzulko M, Pons M, **Henke A**, Schneider G, Krämer O H. 2020 The PP2A subunit PR130 is a key regulator of cell development and oncogenic transformation. BBA – Rev. Cancer 1874: 188453.
08. Egorova A, Kazakova E, Jahn B, Ekins S, Makarov V, **Schmidtke M**. 2020\. Novel pleconaril derivatives: Influence of substituents in the isoxazole and phenyl rings on the antiviral activity against enteroviruses. Eur J Med Chem 188:112007.
09. Eiden S, Dijkman R, **Zell R**, Fuchs J, Kochs G. 2020. Using a mouse-adapted A/HK/01/68 influenza virus to analyse the impact of NS1 evolution in codons 196 and 231 on viral replication and virulence. Journal of General Virology 101:587-598.
10. **Graber K, Khan F**, **Glück B**, Weigel C, **Marzo S**, Doshi H, **Ehrhardt C**, Heller R, Gräler M, **Henke A**. 2020\. The role of sphingosine-1-phosphate signaling in HSV-1-infected human umbilical vein endothelial cells. Virus Res 276:197835.
11. Huber R, Augsten S, Kirsten H, **Zell R**, Stelzner A, Thude H, Eidner T, Stuhlmüller B, Ahnert P, Kinne RW. 2020. Identification of New, Functionally Relevant Mutations in the Coding Regions of the Human Fos and Jun Proto-Oncogenes in Rheumatoid Arthritis Synovial Tissue. Life (Basel). 2020 Dec 23;11(1):E5.
12. Langeder J, Grienke U, Chen Y, Kirchmair J, **Schmidtke M**, Rollinger JM. 2020. Natural products against acute respiratory infections: Strategies and lessons learned. J Ethnopharmacol 248:112298.
13. Langeder J, Grienke U, **Döring K**, Jafari M, **Ehrhardt C**, **Schmidtke M**, Rollinger JM. 2020. High-performance Countercurrent Chromatography to Access Rhodiola rosea Influenza Virus Inhibiting Constituents. Planta Med doi:10.1055/a-1228-8473.
14. Lapuente D, Stab V, Storcksdieck Genannt Bonsmann M, Maaske A, Koster M, Xiao H, **Ehrhardt C**, Tenbusch M. 2020. Innate signalling molecules as genetic adjuvants do not alter the efficacy of a DNA-based influenza A vaccine. PLoS One 15:e0231138.
15. Reckziegel M, Weber-Osel C, Egerer R, Gruhn B, Kubek F, Walther M, Wilhelm S, **Zell R**, Krumbholz A. 2020. Viruses and atypical bacteria in the respiratory tract of immunocompromised and immunocompetent patients with airway infection. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases 39:1581-1592.
16. Rodel J, Egerer R, Suleyman A, Sommer-Schmid B, Baier M, **Henke A**, Edel B, Löffler B. 2020. Use of the variplex SARS-CoV-2 RT-LAMP as a rapid molecular assay to complement RT-PCR for COVID-19 diagnosis. J Clin Virol 132:104616.
17. **Schicke E**, Cseresnyes Z, Rennert K, **Vau V, Haupt KF, Hornung F**, Nietzsche S, Swiczak F, **Schmidtke M, Glück B**, Koch M, **Schacke M**, Heller R, Mosig AS, Figge MT, **Ehrhardt C**, Löffler B, **Deinhardt-Emmer S**. 2020\. Staphylococcus aureus Lung Infection Results in Down-Regulation of Surfactant Protein-A Mainly Caused by Pro-Inflammatory Macrophages. Microorganisms 8.
18. Schreiber A, Liedmann S, Brunotte L, Anhlan D, **Ehrhardt C**, Ludwig S. 2020. Type I interferon antagonistic properties of influenza B virus polymerase proteins. Cell Microbiol 22:e13143.
19. Simmonds P, Gorbalenya AE, Harvala H, Hovi T, Knowles NJ, Lindberg AM, Oberste MS, Palmenberg AC, Reuter G, Skern T, Tapparel C, Wolthers KC, Woo PCY, **Zell R**. 2020\. Recommendations for the nomenclature of enteroviruses and rhinoviruses (vol 171, pg 561, 2020). Archives of Virology 165:1515-1515.
20. Tzitzoglaki C, McGuire K, Lagarias P, Konstantinidi A, Hoffmann A, Fokina NA, Ma C, Papanastasiou IP, Schreiner PR, Vazquez S, **Schmidtke M**, Wang J, Busath DD, Kolocouris A. 2020. Chemical Probes for Blocking of Influenza A M2 Wild-type and S31N Channels. ACS Chem Biol 15:2331-2337.
21. Walther C, Döring K, **Schmidtke M.** 2020\. Comparative in vitro analysis of inhibition of rhinovirus and influenza virus replication by mucoative secretolytic agents and plant extracts. BMC Complement Med Ther. 2020 Dec 23;20(1):380.
22. Wilden JJ, Hrincius ER, Niemann S, Boergeling Y, Löffler B, Ludwig S, **Ehrhardt C.** 2020\. Impact of Staphylococcus aureus Small Colony Variants on Human Lung Epithelial Cells with Subsequent Influnenza Virus Infection. Microorganisms. 2020 Dec 15;8(12):1998.
23. Wilden JJ, van Krüchten A, Gieselmann L, Hrincius ER, **Deinhardt-Emmer S, Haupt KF**, Preugschas HF, Niemann S, Ludwig S, **Ehrhardt C.** 2020\. The influenza replication blocking inhibitor LASAG does not sensitize human epithelial cells for bacterial infections. PLoS One 15:e0233052.
24. **Zell R**, Gorbalenya AE, Knowles NJ, Simmonds P, Skern T. 2020. How to recognise and deal with dubious virus sequences? Infection Genetics and Evolution 81.
25. **Zell R**, Groth M, Krumbholz A, Lange J, Philipps A, Dürrwald R. 2020. Cocirculation of Swine H1N1 Influenza A Virus Lineages in Germany. Viruses-Basel 12.
26. **Zell R**, Groth M, Krumbholz A, Lange J, Philipps A, Dürrwald R. 2020. Novel reassortant swine H3N2 influenza A viruses in Germany. Sci Rep; 10(1):14296.
27. **Zell R**, Groth M, Krumbholz A, Lange J, Philipps A, Dürrwald R. 2020. Displacement of the Gent/1999 human-like swine H1N2 influenza A virus lineage by novel H1N2 reassortants in Germany. Arch Virol; 165(1):55-67.

## 2021

1\. Batram M, Witte J, Schwarz M, Hain J, Ultsch B, Steinmann M, Bhavsar A, **Wutzler P**, Criée C-P, Hermann C, Wahle K, Füchtenbusch M, Greiner W. 2021. Burden of Herpes Zoster in Adult Patients with Underlying Conditions: Analysis of German Claims Data, 2007-2018. Dermatol Ther 11(3):1009-1026, doi: 10.1007/s13555-021-00535-7.

2\. Dastjerdi A, Everest DJ, Davies H, Denk D, **Zell R.** 2021\. A novel dicistrovirus in a captive red squirrel (Sciurus vulgaris). J Gen Virol 102.

3\. Deinhardt-Emmer S, **Böttcher S, Häring C, Giebeler L, Henke A, Zell R, Jungwirth J**, Jordan PM, Werz O, Hornung F, Brandt C, Marquet M, Mosig AS, Pletz MW, **Schacke M**, Rödel J, Heller R, Nietzsche S, Löffler B, **Ehrhardt C**. 2021\. SARS-CoV-2 causes severe epithelial inflammation and barrier dysfunction. J Virol doi:10.1128/JVI.00110-21.

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5\. Deinhardt-Emmer S, Wittschieber D, Sanft J, Kleemann S, Elschner S, Haupt KF, Vau V, **Häring C**, Rodel J, **Henke A, Ehrhardt C**, Bauer M, Philipp M, Gassler N, Nietzsche S, Löffler B, Mall G. 2021. Early postmortem mapping of SARS-CoV-2 RNA in patients with COVID-19 and the correlation with tissue damage. Elife 10.

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