꿀풀 꽃과 잎 열수 추출액을 농도별로 달리 첨가 배양한 lactic acid bacteria 배양액과 control 간의 흡광도 감소율(EDA)을 측정하기 위하여, 2-deoxy-ribose oxidation method 방법을 변형하여 hydroxyl radical 소거활성능을 측정하였다. HSA로 표기하여 sample과 control의 흡광도를 비교하여 EDA를 계산하였다.
<p>전자 공여능(Electron donating ability, EDA( \( \% \)))은 꿀풀 꽃과 잎 열수 추출액을 농도별로 첨가하여 배양시킨 lactic acid bacteria 배양액과 control의 흡광도 감소율로 나타내었다.</p> <p>EDA( \( \% \)) = (1- 꿀풀 꽃과 잎 열수 추출액을 농도별로 첨가하여 배양시킨 lactic acid bacteria 배양액 흡광도/ control의 흡광도 \( ) \times 100 \)</p> <h2>Hydroxyl radical 소거활성 측정</h2> <p>농도별로 희석된 꿀풀 꽃과 잎 열수 추출액을 농도별로 첨가하여 48시간 배양시킨 lactic acid bacteria 배양액의 hydroxyl radical \( ( \mathrm { OH } \cdot) \) 소거활성능을 조사하기 위해 2-deoxy-ribose oxidation method 방법을 변형하여 측정하였다.</p> <p>시험관에 \( 10 \mathrm { mM } \mathrm { FeSO } 4 \) / EDTA 용액 \( 0.2 \mathrm { ml } , 10 \mathrm { mM } \) 2-de-oxyribose \( 0.2 \mathrm { ml } \), 농축액 \( 0.2 \mathrm { ml } \)와 \( 0.1 \mathrm { mM } \) phosphate buffer \( \left ( \mathrm { pH } \right . \) 7.4) \( 1 \mathrm { ml } , 10 \mathrm { mM } \mathrm { H } _ { 2 } \mathrm { O } _ { 2 } 0.2 \mathrm { ml } \)를 가하고 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 4시간 동안 반응 시킨 후, \( 2.8 \% \) TCA (trichloroacetic acid)용액 \( 1 \mathrm { ml } \)를 가하여 반응을 중지 시켰다. 그 후, \( 1.0 \% \) TBA (thiobarbituric acid)용액 \( 1 \mathrm { ml } \)를 가하여 \( 100 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 10분간 가열시킨 후 급속히 냉각시켜 \( 532 \mathrm { ~nm } \)에서 흡광도를 측정하 였으며 시료에 대한 가준시료는 DPPH액을 가지고 측정하였다. \( \mathrm { OH } \) 소거활성은 HSA (hydroxyl radical scavenging ability)로 표기 하였으며 다음과 같은 식으로 계산 하였다.</p> <p>\( \operatorname { HSA } ( \%)=[1-[( \) absorbance of sample at \( 532 \mathrm { ~nm } ) / \) (absorbance of control at \( 532 \mathrm { ~nm } )]] \times 100 \)</p>