Pellegrin 등의 방법을 이용해 ABTS 라디칼 카티온 제거를 측정하였으며, 이를 위해 특정 비율로 섞은 ABTS와 \( \mathrm { K } _ { 2 } \mathrm { S } _ { 2 } \mathrm { O } _ { 8 } \) 용액을 사용하였다. 다양한 균주에 대해 각기 다른 배지를 사용하여 배양하였고, 배양은 BOD in-cubator와 \( \mathrm { CO } _ { 2 } \) incubator에서 37도에서 진행하였다. ABTS 라디칼 카티온 제거는 첨가군과 무첨가군의 흡광도 감소율로 나타내었으며, 백탁 현상 방지를 위해 에탄올을 이용한 희석을 실시하였다.
<h2>\( 2,2 ^ {\prime } \)-azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) radical cation decolorization 측정</h2> <p>ABTS radical cation decolorization의 측정은 Pellegrin 등의 방법에 의해 측정하였다. 즉, \( 7 \mathrm { mM } \) ABTS와 \( 140 \mathrm { mM } \) \( \mathrm { K } _ { 2 } \mathrm { S } _ { 2 } \mathrm { O } _ { 8 } \) 을 \( 5 \mathrm { ml } : 88 \) 씨로 섞어 어두운 곳에 \( 14 \sim 16 \) 시간 방치 시킨 후, 이를 absolute ethanol과 1:88 비율로 섞어 \( 734 \mathrm { ~nm } \) 에서 대조구의 흡광도 값이 \( 0.7 \pm 0.002 \) 가 되도록 조절한 ABTS solution을 사용하였다. 시료 용액과 positive control 로서 butylated hydroxy toluene (BHT) 각각 \( 50 \mu { l } \)와 ABTS solution \( 1 \mathrm { ml } \) 를 30 초 동안 섞은 후 \( 2.5 \) 분간 incubation하여 \( 734 \mathrm { ~nm } \) 에서 홉광도를 측정하였다. ABTS radical cation de-colorization은 시료용액의 첨가군와 무첨가군의 흡광도 감소율로 나타내었다. 샘플의 백탁 현상을 방지하게 위해 \( 99 \% \) 에탄올을 이용하여 5,000, 1,000, 100, \( 10 \mathrm { ~ppm } \) 순으로 농도 희석하여 사용하였다.</p> <h2>균 배양</h2> <p>전 배양 및 본 배양을 위한 액체배지로는 Staphylococcus aureus균은 tryptic soy broth (TSB)을 사용하였고, Staphylococcus epidermidis균과 Escherichia coli균은 nutrient broth (NB)를 사용하였으며, Propionibacterium acnes균은 gifu anaerobic medium (GAM)을, Streptococcus mutans균은 brain heart infusion (BHI)를, Pityrosporum ovale균은 sabouraud dextrose broth (SDB)를, Candida albicans 균은 YM broth(YMB)를 각각 계대 배양하여 사용하였다. 상기 액체배지에 agar를 첨가하여 본 실험에 사용하였으며, 각 균주를 BOD in-cubator와 \( \mathrm { CO } _ { 2 } \) incubator에서 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 로 배양하였다.</p> <h2>생육 저해환(Clear zone) 측정</h2> <p>항균력 측정은 paper disc법을 이용하여 측정하였다. 즉, 평판 배지에 배양된 각 균주를 1 백금이 취해서 액체 배지 \( 10 \mathrm { ml } \) 에서 \(18 \sim 24 \) 시간 배양하여 활성화시킨 후 다시 액체 배지 \( 10 \mathrm { ml } \) 에 균핵을 \( 0.1 \mathrm { ml } \) 접종하여 \( 3 \sim 6 \) 시간 본 배양한 후 평판배지 1 개당 균수가 약 \( 1 \times 10 ^ { 7 } \) cells이 되게 접종하여 멸균 면봉으로 균일하게 도말 하였다. 멸균된 filter paper disc (8 \( \mathrm { mm } \), Tokyo, Japan)를 고체 평판배지에 올려놓은 다음 \( 0.05 \) \( \mathrm { ml } / \mathrm { disc } \) 가 되도록 시료를 농도 별로 흡수시켜 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 에서 \(18 \sim 24 \) 시간 배양하여 disc 주위의 clear zone \( ( \mathrm { mm } \) )의 직경을 측정하였다.<h1>초록 : 천연 에센셜 오일의 주요 구성물질 분석과 항산화 및 항균 효과에 관한 연구</h1> <p>본 연구에서는 화장품산업에 이용 중인 천연 에센셜 오일 8종(라벤더, 티트리, 로즈마리, 주니퍼베리, 편백, 싸이프러스, 시더우드, 파인)을 가지고 물리 화학적 분석과 생리활성 및 항균효과를 실험하였다. 라벤더오일의 경우 에스테르 성분인 linalyl acetate가 \( 48 \% \) 함유되어 있었으며, \( 5,000 \mathrm { ppm } \)의 농도에서 \( 22.36 \% \)의 항산화능을 보였다. 티트리 오일의 경우 \( 0.5 \% \) 농도에서 \( 43.94 \% \) 항산화능을 보였으며 항균효과 또한 뛰어났다. S. aureus, S. epi-dermidis, S. mutans, C. albicans 균에 각각 \(6, 3.5, 6.5 ,5 \mathrm { ~mm } \)의 저해환이 측정되어 매우 우수한 품질의 에센셜 오일임이 확인되었다. 편백 오일의 경우 \( \mathrm { pH } \)가 2.64로 가장 산성도가 높았으며, 세스퀴테르펜 성분이 \( 19.20 \% \)로 확인되었다. 시더우드 오일의 경우 샘플 중 비중과 굴절률이 가장 높았으며 전체성분의 \( 99.73 \% \)가 세스퀴테르펜으로 구성되어 있었다. 또한 \( 5,000 \mathrm { ppm } \) 농도에서 \( 39.68 \% \) 항산화능을 보였다. 특히 \( 1 \% \) 농도에서 P. acnes, P. ovale, C. allicans 균에 각각 \( 3.5,6,6 \mathrm { ~mm } \)의 저해환이 측정되어 매우 탁월한 항균효과를 보였다. 반면 세스퀴테르펜 함량이 증가할수록 비교적 항산화능도 높게 나오는 경우도 있지만 그렇지 않은 경우도 있어서 성분조성보다는 각각의 항산화 성분 유무에 따라 항산화능이 결정된다고 판단되며, 마찬가지로 항균력 또한 테르펜의 성분조성보다는 각각의 항균성분의 유무에 따라 항균력이 결정된다고 사료된다.</p>