7개의 \( S \). fibuligera 균주를 요오드 염색법으로 조사하고 배양온도에 대한 \( S \). fibuligera 의 성장속도를 조사하기 위하여 전분을 함유한 배지에서 비성장속도를 측정하였으며 가용성 전분이 함유된 배지에서 균주를 배양한 후 상등액을 회수하여 \( 30,37,42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 전분 분해 효소활성을 측정하였고 fibuligera KCTC7806 및 MBY1320 균주의 균체 성장속도와 에탄올 생산속도를 비교한 결과 높은 온도의 성장속도와 전분분해 활성이 우수한 fibuligera MBY1320 균주는 육종 및 개량을 통하여 전통주 및 에탄올산에 사용할 수 있는 후보균주로서 사용할 수 있을 것으로 판단된다.
<p>누룩에서 분리한 7점의 \( S \). fibuligera 균주의 전분분해 활성을 요오드 염색법으로 조사하였다(Fig. 1). MBY1276, \( 1280,1320,1322 \) 및 MBY1323 균주는 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 대조구인 KCTC7806 균주와 비슷한 크기의 전분 분해환을 나타냈으며, 예산지역에서 수집된 누룩에서 분리된 MBY1327 균주의 전분 분해환의 크기가 가장 작게 나타났다. 그러나 \( \mathrm { KCTC } 806 \) 균주와 MBY1324 균주는 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 전분 분해환이 거의 나타나지 않았으며 MBY \( 1280, 1320,1322,1323 \) 및 MBY1327 균주는 전분 분해환을 나타내었다. 배양온도에 대한 \( S \). fibuligera 의 성장속도를 조사하기 위하여 전분을 함유한 배지에서 비성장속도를 측정하였다. 대조구인 KCTC7806 균주의 비성장속도는 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 \( 0.25 \mathrm { ~h } ^ { -1 } \)로 측정되었으며, \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서는 \( 93.7 \% \) 감소한 수준인 \( 0.016 \mathrm { ~h } ^ { -1 } \)로 나타났다. 누룩에서 분리한 \( S \). fibuligera 균주 중에서 MBY1320 균주는 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 비성장속도가 \( 0.31 \mathrm { ~h } ^ { -1 } \)로 대조구보다 높은 비성장속도를 나타냈으며 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 비성장속도가 \( 0.28 \mathrm { ~h } ^ { -1 } \)로 대조구인 KCTC7806 균주의 비성장속도보다 약 \( 94 \% \) 높은 수준을 나타내어 대조구보다 내열성이 우수한 것으로 판단되었다. 가용성 전분이 함유된 배지에서 균주를 배양한 후 상등액을 회수하여 \( 30,37,42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 전분 분해 효소활성을 측정하였다. 대조구인 KCTC7806 균주는 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 가장 우수한 \( \alpha \) -amylase 효소활성을 나타냈지만 반응온도의 증가에 따라 효소활성이 급격히 감소하였다. MBY1320 균주는 대조구인 KCTC7806 균주보다 낮은 수준의 \( \alpha \)-amylase 효소활성을 나타내었지만 반응온도가 증가함에 따라 \( \alpha \)-amylase 효소활성이 유의적으로 증가하는 경향을 나타내었지만 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 KCTC7806 균주가 나타낸 \( \alpha \)-amylase 효소활성의 약 \( 38.8 \% \) 수준이었다. 대조구인 KCTC7806 균주의 glucoamylase 효소활성은 \( 30 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 상대적으로 높은 효소활성을 보이지만, 반응온도가 증가할수록 효소활성이 유의적으로 감소하여 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 에서는 효소활성이 거의 나타나지 않았다. MBY \( 1280, 1320,1322,1323 \) 및 MBY1324 균주는 glucoamylase 효소활성이 KCTC7806 균주에 비해 상대적으로 낮았으며 MBY1276 균주는 \( 30 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 \( 583.0 \mathrm { U } \)으로 높은 효소활성을 나타냈으나 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \)이상으로 반응온도가 상승하면서 활성이 급격히 감소 하였다. 그러나 MBY1320 균주는 반응온도가 증가할수록 glucoamylase 효소활성이 증가하였으며 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \)에서 \( 1,006.9 \mathrm { U } \)로 가장 우수한 효소활성을 나타내었다. 이러한 결과는 MBY1320 균주가 대조구인 KCTC7806 균주를 비롯한 다른 \( S \). fibuligera 균주에 비해 높은 배양온도에서도 상대적으로 빠른 비성장속도로 성장하는 것을 부분적으로 뒷받침하는 결과로 판단되었다. 가용성 전분을 탄소원으로 사용하여 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 에서 S. fibuligera KCTC7806 및 MBY1320 균주의 균체 성장속도와 에탄올 생산속도를 비교하였다. 대조구인 KCTC7806 균주는 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 에서 에탄올 생산량이 배양 36시간 경과 후 약 \( 0.25 \mathrm { ~g } / \)이었으나, MBY1320 균주는 \( 0.32 \mathrm { ~g } / \) 로 상대적으로 우수한 에탄올 생산성을 나타내었다. 또한 가용성 전분을 탄소원으로 이용하여 성장할 때 MBY1320 균주의 비성장속도가 KCTC7806 균주보다 유의적으로 높은 수준을 나타내었다. 이러한 결과는 \( 42 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 에서 MBY1320 균주의 glucoamylase의 효소활성이 상대적으로 높은 것과 관련이 있는 것으로 판단되었다. 전분의 당화에 필요한 공정을 생략 또는 축소할 경우 에탄올 생산경비를 절감할 수 있으므로 전분 분해활성이 우수한 효모를 이용하여 전분을 직접 에탄올로 전환시키는 방법이 개발되고 있다. 또한, 에탄올 생산에 적합한 효모 종균으로서 내열성, 에탄올 내성, 전분 발효능 및 응집성 등이 요구되고 있으므로 기존의 \( S \). fibuligera 균주보다 높은 온도에서 전분분해 활성 및 성장속도가 우수한 \( S \). fibuligera MBY1320 균주는 육종 및 개량을 통하여 전통주 및 에탄올산에 사용할 수 있는 후보균주로서 사용할 수 있을 것으로 판단된다.</p>