본 논문은 조다당류 두여 최종일로부터 하루가 지난 뒤 마우스를 경추탈골시켜 복강 세포를 채취하여 Turk's solution으로 염색한 후 혈구계수기를 이용해 측정하고, 추출물 투여 최종일로부더 2일 후 혈액을 채취하여 Turk's solution으로 염색한 후 혈구계수기로 백혈구 수를 측정하는 과정을 설명한다. 3 종류의 용매를 이용하여 송이의 자실체에서 추출한 조다당류의 수득률을 구한 결과 수득율이 각기 달랐는데, 이는 서로 다른 버섯의 종류에 따라 자실체함유 조다당류 함량의 차이가 있기 때문이다.
<h2>총 복강세포 수에 미치는 영향 분석</h2> <p>6 주령의 ICR 웅성 마우스를 실험군과 대조군으로 나누어 3 일간 연속으로 \( 10,20,50 \mathrm { mg } / \mathrm { kg } \) body weight의 농도로 나섯추출 조다당류를 복강 내에 투여하였고, 대조군은 생리 식염수를 두여하였다. 조다당류 두여 최종일로부터 24 시간 후 마우스를 경추탈골시켜 \( 10 \mathrm { ml } \) 의 PBS buffer (pH 7.2)로. 복강내를 세척한 다음 복강 세포를 채취하여 Turk's solution으로 염색한 후 혈구계수기를 이용하여 측정하였다.</p> <h2>혈 중 백혈구 수와 면역 장기의 중량에 미치는 영향 분석</h2> <p>6주령의 ICR 웅성 마우스를 실험군과 대조군으로 나누어 10 일간 연속으로 복강 내에 \( 10,20,50 \mathrm { mg } / \mathrm { kg } \) body weight 의 농도로 조다당류를 투여하였으며, 대조군은 생리식염수 를 투여하였다. 추출물 투여 최종일로부더 2일 후 심장 채혈 하여 혈액을 채취하여 Turk's solution으로 염색하여 혈구계수기로 백혈구 수를 측정하였다. 또한 간, 비장 및 흡선을 적출하여 중량을 측정하였다. 실험군과 대조군의 상대장기 중량은 장기의 중량을 부검 전 체중으로 나누어 백분율로 산출 하였다.</p> <h1>결과 및 고찰</h1> <h2>성분의 추출 및 분리</h2> <p>3 종류의 용매를 이용하여 송이의 자실체에서 추출한 조다당류의 수득률은 \( 80 \% \) 의 메탄올에서 \( 54.1 \mathrm { ~g } \) 이 추출되어 가장 높은 \( 13.5 \% \) 의 수득률을 보였고, 중성염에서는 \( 4.7 \mathrm { ~g } \) 이 추출되어 \( 1.2 \% \) 의 수득률을 나타내있으며, 열수에서 가장작은 \( 1.4 \mathrm { ~g } \) 이 추출되어 \( 0.4 \% \) 의 수득률을 나타내었다(Table 1). 이와 같은 결과는 금목이의 자실체로부터 각각 메탄올퐈 중성염 용액으로 추출한 조다당류의 수득률인 \( 8.3 \% \) 와 \( 0.6 \% \) 에 비해서는 높있고, 저령의 균핵에서 메탄올로 추출한 조다 당류 수득률인 9.8 \%에 비해서도 높았다. 그려나 민긴뿌리버섯 자실체에서 각각 메탄올과 중성염으로 추출한 \( 18.5 \% \) 와 5.3 \%의 수득률에 비해서는 낮게 나타났다. 이와 같은 결과는 서로 다른 버섯의 종류에 따라 자실체함유 조다당류 함량의 차이에 의한 것으로 사료된다.</p>