Hitachi 736-20, 7170 자동 분석기를 이용해 T-C와 TG를 측정하였으며, SPSS/PC \( { } ^ { + } \) 패키지로 자료를 처리하였다. 측정 변인의 평균과 표준편차를 구하고, 집단 간 차이는 one way-ANOVA로 분석하였다. 또한 사후 검증을 위해 Duncan 방법을 사용하였고, 유의수준은 \( \alpha=. 05 \)로 설정하였다.
<h3>3) T-C</h3> <p>T-C의 측정은 Hitachi 736-20,7170 automatic를 이용하여 분석하였다. sample \( 3 \mu l \) 에 R1 시약 \( 350 \mu \ell \) 를 반응하여 주파장 \( 546 \mathrm { ~nm } \), 부파장 \( 600 \mathrm { ~nm } \)에서 측정하였다.</p> <h3>4) HDL-C</h3> <p>HDL-C의 측정은 효소법을 이용하여 분석하였다. 먼저 시험관에 혈장 \( 0.2 \mathrm { ~m } \ell \) 를 넣은 뒤 침강시약 \( 0.2 \mathrm { ~m } \ell \) 를 잘 혼합시켜, 실온에서 5 분 이상 방치한 후 원심분리하였다. 시험관에 검체혈장, 표준액, 정수제를 각각 \( 0.1 \mathrm { m \ell } \) 씩 넣고 모든 실험관에 효소용액 \( 3.0 \mathrm { ~m } \ell \) 를 분배하여 \( 37 ^ {\circ } \mathrm { C } \) 로 고정된 수조에서 5분간 반응시킨 후 120분 이내에 blank를 대조하여 검체 및 표준의 홉광도를 파장 \( 580 \mathrm { ~nm } \)에서 측정하였고, 그 측정값은 표준액의 흡광도를 검체의 흡광도로 나눈 다음 300을 곱한 값으로 하였다.</p> <h3>5) LDL-C</h3> <p>LDL-C의 측정은 시험관에 혈장 \( 0.05 \mathrm { ~m } \ell \) 를 넣은 뒤 R1시약 \( 1 m l \)를 분주하여 냉장 30분 후에 원심분리하였다. 침전된 부분에 R2 시약 \( 0.5 \mathrm { ~m } \) 를 분주하여 Hitachi 7170 에 전용 cup를 이용하여 검체를 넣어 측정하였다.</p> <h3>6) TG</h3> <p>TG의 측정은 Hitachi 736-20, 7170 automatic를 이용하여 분석하였다. sample \( 3 \mu l \) 에 R1 시약 \( 350 \mu l \) 를 반응하여 주파장 \( 546 \mathrm { ~nm } \), 부파장 \( 600 \mathrm { ~nm } \)에서 측정하였다.</p> <h2>자료 처리</h2> <p>자료는 SPSS/PC \( { } ^ { + } \)package를 이용하여 처리하고, 각 측정 변인의 평균과 표준편차를 구하였으며, 집단 간의 차이를 알아보기 위하여 one way-ANOVA를 실시하였다. 사후 검증은 Duncan을 이용하였으며, 유의수준은 \( \alpha=.05 \) 로 하였다.</p> <h1>결과 및 고찰</h1> <h2>인슐린 및 leptin</h2> <p>경도, 중도, 고도비만초등학생들의 인슐린 및 leptin의 검사결과는 Table 2와 Fig. 1에 나타내었다. 인슐린에 의한 글루코오스 홉수의 증가는 글루코오스를 전달하는 세포막의 GLUT와 같은 전달 단백질을 활성화시킴으로써 일어난다. 간에서 인슐린은 글루코오스를 글리코겐으로 합성하는 합성효소를 활성화시킴으로써 글리코겐 합성을 촉진시킨다. 근육에서도 인슐린은 글리코겐 합성을 증가시키는데, 글리코겐 합성효소롤 증가시킴으로써 섭취된 글루코오스 중 사용되지 않은 글루코오스를 글리코겐으로 합성 저장하고, 포스포디에스테라아제(phosphodiester-ase)를 활성화시킴으로써 글리코겐 분해를 촉진하는 cAMP의 농도를 감소시키고 글리코겐 분해를 억제한다.</p>